Neumonía caseonecrótica por Mycoplasma bovis en una becerra (Bos taurus)
PDF

Palabras clave

Micoplasmosis licuefactiva
Respiratorio
Histopatología
PCR
Cadáver
Becerra

Cómo citar

1.
Olguin y Bernal AF, Hidalgo León Y, Bailón Blanco A, Bedolla Alva MA, González López R. Neumonía caseonecrótica por Mycoplasma bovis en una becerra (Bos taurus). CV [Internet]. 13 de diciembre de 2023 [citado 27 de abril de 2024];9. Disponible en: https://revistas.fmvz.unam.mx/index.php/Clinica-Veterinaria/article/view/100

PLUMX Metrics

Resumen

Descripción del caso. Becerra Holstein Friesian de dos meses de edad con alteración respiratoria. Alojada en una unidad especializada en la producción de leche, con  antecedentes de enfermedad respiratoria no responsiva a la terapia antibiótica.

Hallazgos clínicos. La becerra presentó hiporexia, decaimiento, disnea, respiración abdominal y postración. A la auscultación, se identificaron estertores secos en puntos específicos de los campos pulmonares; temperatura corporal de 39.5 °C, frecuencia cardíaca de 115 latidos por minuto y respiración abdominal con frecuencia respiratoria de 62 respiraciones por minuto; sin presentar ninguna otra signología evidenciando la afectación de otro órgano. En la necropsia, los hallazgos macroscópicos encontrados fueron congestión en lóbulos pulmonares craneales, intermedio, accesorio y porción cráneo-ventral de los lóbulos caudales; además de múltiples áreas nodulares de necrosis licuefactiva que en los cortes involucraban el parénquima.

Tratamiento y evolución. Se administró penicilina G procaínica con estreptomicina durante siete días, al no observarse mejoría, se sustituyó el antibiótico por tilosina, piroxicam y bromhexina, durante ocho días, el animal mostró leve mejoria y posteriormente murió.

Pruebas de laboratorio. En el examen histopatológico, los pulmones presentaban múltiples áreas de necrosis licuefactiva con un centro necrótico delimitado, rodeado de neutrófilos degenerados y macrófagos en menor cantidad. En otros focos se apreció necrosis coagulativa parcialmente delimitada, entremezclada con neutrófilos degenerados y necróticos; así como depósito de material fibrilar eosinofílico (fibrina) y edema. En el examen bacteriológico se aisló Mycoplasma spp., y por medio de la prueba de Reacción en Cadena de la Polimerasa, se identificó como Mycoplasma bovis.

Relevancia clínica. Mycoplasma bovis incide hasta en un 50 % en animales de uno a cinco meses de edad. Considerando el riesgo de que los animales infectados queden como portadores y, debido a que no hay vacunas disponibles en nuestro país y su efectividad es todavía incierta, la prevención es primordial.

https://doi.org/10.22201/fmvz.23958766e.2023.9.100
PDF

Referencias

Caswell JL, Archambault M. Mycoplasma bovis pneumonia in cattle. Anim Health Res Rev. 2007(Dec);8(2):161–186.

Xu QY, Pan Q, Wu Q, Xin JQ. Mycoplasma bovis adhesins and their target proteins. Front Immunol. 2022(Oct 20);13:1016641. doi: 10.3389/fimmu.2022.1016641.

Ridley A, Hateley G. Mycoplasma bovis investigations in cattle. VetRecord. 2018;183(8):256–258. doi: 10.1136/vr.k3722op.

Smith BP, van Metre DC, Pusterla N, editors. Large Animal Internal Medicine. 6a edición. St. Louis, Mo: Mosby; 2019. 1949 pp.

Miklós Tenk. Examination of Mycoplasma bovis Infection in Cattle [tesis doctoral]. Budapest: Szent Istvan University, Postgraduate School of Veterinary Science; 2005.

Maunsell FP, Woolums AR, Francoz D, Rosenbusch RF, Step DL, Wilson DJ, et al. Mycoplasma bovis infections in cattle. J Vet Intern Med. 2011(Aug);25(4):772–783.

Gyles CL, Prescott JF, Songer JG, Thoen CO, editors. Pathogenesis of Bacterial Infections in Animals. 4a edición. Ames, Iowa: Wiley-Blackwell; 2010. 664 pp.

Sachse K, Grajetzki C, Rosengarten R, Hänel I, Heller M, Pfützner H. Mechanisms and factors involved in Mycoplasma bovis adhesion to host cells. Zentralblatt Für Bakteriol. 1996(Jun 1);284(1):80–92. doi: 10.1016/S0934-8840(96)80157-5.

Askar H, Chen S, Hao H, Yan X, Ma L, Liu Y, et al. Immune evasion of Mycoplasma bovis. Pathogens. 2021(Mar 4);10(3):297. doi: 10.3390/pathogens10030297.

Rojas TV. Aislamiento, tipificación, bioquímica molecular de cepas de Mycoplasma bovis aislados de leche de bovino procedente de tanque de almacenamiento. DF, México: Universidad Nacional Autónoma; 2008.

Aye R, Kiogora M, Frey Joachim, Pilo P, Jores J, Naessens J. Citoadherence of Mycoplasma mycoides subsp. mycoides to bovine lung epithelial cells. BMC Vet Res. 11(27):2005.

Nicholas R, Ayling R, McAuliffe L. Mycoplasma Diseases of Ruminants: Disease, Diagnosis and Control. Wallingford, Oxfordshire, England: CABI; 2008. 256 pp.

Pfützner H, Sachse K. Mycoplasma bovis as an agent of mastitis, pneumonia, arthritis and genital disorders in cattle. Rev Sci Tech Int Off Epizoot. 1996(Dec);15(4):1477–1494.

Jasper DE. Bovine mycoplasmal mastitis. Adv Vet Sci Comp Med. 1981;25:121–57.

Parker AM, Sheehy PA, Hazelton MS, Bosward KL, House JK. A review of mycoplasma diagnostics in cattle. J Vet Intern Med. 2018;32(3):1241–1252. doi: 10.1111/jvim.15135.

Nicholas RAJ, Ayling RD. Mycoplasma bovis: disease, diagnosis, and control. Res Vet Sci. 2003(Apr 1);74(2):105–112. doi: 10.1016/S0034-5288(02)00155-8.

Avisos de derechos de autor propuestos por Creative Commons

Aquellos autores que tengan publicaciones con esta revista, aceptan la Licencia de reconocimiento de Creative Commons 4.0.

Descargas

Los datos de descargas todavía no están disponibles.